PL EN
OCENA SKUTECZNOŚCI DROŻDŻY AUREOBASIDIUM PULLULANS, DEBARYOMYCES HANSENII I RHODOTORULA GLUTINIS W OGRANICZENIU SEPTORIOZY PASKOWANEJ LIŚCI PSZENICY (ZYMOSEPTORIA TRITICI)
 
Więcej
Ukryj
1
UWM w Olsztynie, Wydział Kształtowania Środowiska i Rolnictwa
 
 
Data publikacji: 27-07-2021
 
 
2018;(592):97-106
 
SŁOWA KLUCZOWE
STRESZCZENIE
Grzyb Zymoseptoria tritici, sprawca septoriozy paskowanej liści, jest jednym z najgroźniejszych patogenów pszenicy między innymi z powodu bardzo długiego okresu inkubacji w tkankach roślin (faza bezobjawowa trwa nawet 10 dni) oraz bardzo szybkiego tempa rozprzestrzeniania się na plantacji, a także trudności w jego zwalczaniu metodami chemicznymi. Jedną z naturalnych metod ograniczenia rozwoju tego patogenu jest uprawa odmian o mniejszej podatności na infekcję. Alternatywą jest także poszukiwanie skutecznych biologicznych metod ochrony. Doświadczenia polowe prowadzono w dwóch lokalizacjach w północno-wschodniej Polsce na dwóch odmianach Triticum aestivum (‘Tonacja’ i ‘Skagen’) i jednej T. durum (‘Komnata’). Celem badań była ocena skuteczności zabiegów biologicznych polegających na opryskiwaniu roślin zawiesiną drożdży Aureobasidium pullulans, Debaryomyces hansenii i Rhodotorula glutinis w ograniczeniu objawów septoriozy paskowanej liści pszenicy. Odmiana Komnata charakteryzowała się mniejszą podatnością na infekcje liści Z. tritici niż odmiany Skagen i Tonacja. Skuteczność zabiegów biologicznych w ograniczeniu objawów septoriozy paskowanej liści odmiany Tonacja oszacowano na poziomie 59,3% dla izolatu A. pullulans oraz 56,7% dla D. hansenii. Zabiegi biologiczne nie miały istotnego wpływu na plonowanie pszenicy.
 
REFERENCJE (28)
1.
Bargabus R.L., Zidack N.K., Sherwood J.E., Jacobsen B.J., 2003. Oxidative burst elicited by Bacillus mycoides isolate Bac J, a biological control agent, occurs independently of hypersensitive cell death in sugar beet. Mol. Plant Microbe Interact. 16, 1145–1153.
 
2.
Castoria R., De Curtis F., Lima G., Caputo L., Pacifico S., De Cicco V., 2001. Aureobasidium pullulans (LS-30) an antagonist of postharvest pathogens of fruits: Study on its modes of action. Postharvest Biol. Technol. 22(1), 1.
 
3.
Curvers K., Pycke B., Kyndt T., Vanrompay D., Haesaert G., Gheysen G., 2015. A high resolution melt (HRM) assay to characterize CYP51 haplotypes of the wheat pathogen Mycosphaerella graminicola. Crop Prot. 71, 12–18.
 
4.
Droby S., Chalutz E., Wilson C. L., Wisniewski M., 1989. Characterization of the biocontrol activity of Debaryomyces hansenii in the control of Penicillium digitatum on grapefruit. Can. J. Microbiol. 35(8), 794–800.
 
5.
Eriksen L., Munk L., 2003. The occurrence of Mycosphaerella graminicola and its anamorph Septoria tritici in winter wheat during the growing season. Eur. J. Plant Pathol. 109, 253–259.
 
6.
Fraaije B.A., Lucas J.A., Clark W.S., Burnett F.J., 2003. QoI resistance development in populations of cereal pathogens in the UK. The BCPC International Congress-Crop Science & Technology, 689–694.
 
7.
Gerbore J., Benhamou N., Vallance J., Le Floch G., Grizard D., Regnault-Roger C., Rey P. 2014. Biological control of plant pathogens: advantages and limitations seen through the case study of Pythium oligandrum. Environ. Sci. Pollut. Res. 21, 4847–4860.
 
8.
https://bip.minrol.gov.pl/.../... zbóż [dostęp: 02.06.2016].
 
9.
Ippolito A., El Ghaouth A., Wilson CL., Wisniewski M., 2000. Control of postharvest decay of apple fruit by Aureobasidium pullulans and induction of defense responses. Postharvest Biol. Technol. 19, 265–272.
 
10.
Kildea S., Ransbotyn V., Khan M., Fagan B., Leonard G., Mullins E., Doohan F.M., 2008. Bacillus megaterium shows potential for the biocontrol of Septoria tritici blotch of wheat. Biol. Control. 47, 37–45.
 
11.
Kurtzman C., Fell J.W., Boekhout T., 2011. The yeasts: a taxonomic study. Elsevier, London.
 
12.
Leroux P., Albertini C., Gautier A., Gredt M., Walker A.S., 2007. Mutations in the cyp51 gene correlated with changes in sensitivity to sterol 14α-demethylation inhibitors in field isolates of Mycosphaerella graminicola. Pest. Manag. Sci. 63, 688–699.
 
13.
Lima G., De Curtis F., Castoria R., De Cicco V., 2003. Integrated control of apple postharvest pathogens and survival of biocontrol yeasts in semi-commercial conditions. Eur. J. Plant Pathol. 109, 341–349.
 
14.
Lovell D.J., Hunter T., Powers S.J., Parker S. R., Van den Bosch F., 2004. Effect of temperature on latent period of septoria leaf blotch on winter wheat under outdoor conditions. Plant Pathol. 53(2), 170–181.
 
15.
Mavroeidi V.I., Shaw M.W., 2005. Sensitivity distributions and cross-resistance patterns of Mycosphaerella graminicola to fluquiconazole, prochloraz and azoxystrobin over a period of 9 years. Crop Prot. 24, 259–299.
 
16.
Mirzwa-Mróz E., Tvaružek L., Zamorski C., Nowicki B., 2005. Research on the development of Mycosphaerella graminicola (Fuckel) Schroeter teleomorph on wheat leaves. Acta Agrobot. 58(1), 59–65.
 
17.
Perelló A.E., Moreno M.V., Mónaco C., Simón M.R., Cordo C., 2009. Biological control of Septoria tritici blotch on wheat by Trichoderma spp. under field conditions in Argentina. BioControl. 54, 113–122.
 
18.
Rodrigo S., Cuello-Hormigo B., Gomes C., Santamaria O., Costa R., Poblaciones M.J., 2015. Influence of fungicide treatments on disease severity caused by Zymoseptoria tritici, and on grain yield and quality parameters of bread-making wheat under Mediterranean conditions. Eur. J. Plant Pathol. 141(1), 99–109.
 
19.
Rudd J.J., 2015. Previous bottlenecks and future solutions to dissecting the Zymoseptoria tritici – wheat host-pathogen interaction. Fungal Genet. Biol. 79, 24–28.
 
20.
Ryu C.M., Fara M.A., Hu C.H., Reddy M.S., Kloepper J.W., Pare P.W., 2004. Bacterial volatiles induce systemic resistance in Arabidopsis. Plant Physiol. 134, 1017–1026.
 
21.
Slightom J.L., Metzger B.P., Luu H.T., Elhammer A.P., 2009. Cloning and molecular characterization of the gene encoding the aureobasidin A bosynthesis complex in Aureobasidium pullulans BP-1938. Gene 431 67–79.
 
22.
Torriani S.F.F., Brunner P.C., McDonal B.A., Sierotzki H., 2008. Qol resistance emerged independently at least 4 times in European populations of Mycosphaerella graminicola. Pest Manag. Sci. 65, 155–162.
 
23.
Wachowska U., Borowska J., 2014. Antagonistic yeasts competes for iron with winter wheat stem base pathogens. Gesunde Pflanz. 66, 141–148.
 
24.
Wang W., Chi Z., Liu G., Buzdar M.A., Chi Z., 2009. Chemical and biological characterization of siderophore produced by the marine-derived Aureobasidium pullulans HN6.2 and its antibacterial activity. BioMetals 22, 965–972.
 
25.
White T.J., Bruns T., Lee S., Taylor J.W., 1990. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics, 315-322. In: PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, M.A. Innis, D.H. Gelfand, J.J. Sninsky, T.J. White (eds.). Academic Press, New York.
 
26.
Witzenberger A., Hack H., van den Boom T., 1989. Erläuterungen zum BBCH-Dezimal-Code für die Entwicklungsstadien des Getreides – mit Abbildungen. Gesunde Pflanz. 41, 384–388.
 
27.
Zalar P., Gostinčar C., de Hoog G.S., Uršič V., Sudhadham M., Gunde-Cimerman N., 2008. Redefinition of Aureobasidium pullulans and its varieties. Stud. Mycol. 61, 21–38.
 
28.
Żarowska B., 2012. Biosynteza i charakterystyka toksyn killerowych drożdży Debaryomyces hansenii. Wydaw. UP, Wrocław.
 
ISSN:0084-5477
Journals System - logo
Scroll to top