WPŁYW KWASU 2,4-DICHLOROFENOKSYOCTOWEGO NA
EFEKTYWNOŚĆ KULTUR PYLNIKÓW ANDROGENICZNYCH
LINII PAPRYKI CAPSICUM SPP.
1
UTP, Wydział Rolnictwa i Biotechnologii
Publication date: 2021-07-07
2018;(594):27-35
KEYWORDS
ABSTRACT
Celem pracy było zbadanie wpływu oprysku roślin donorowych kwasem 2,4-dichlorofenoksyoctowym w stężeniu 1 mg·l –1 na częstotliwość pojawiania się androgenicznych zarodków w kulturach pylników dziewięciu linii podwojonych haploidów papryki Capsicum spp. W zależności od genotypu i wariantu doświadczenia efektywność androgenezy wahała się od 0 do 8,4%. Analiza statystyczna wykazała istotny wpływ oprysku
2,4-D na odpowiedź androgeniczną linii AT4, AC5 i AC7. W przypadku linii AC5 wstępne
traktowanie egzogenną auksyną zaindukowało tworzenie zarodków (3,2%) i ich konwersję
w rośliny (43,8%). W przypadku linii AT6, AP32, FA i FCH także zaobserwowano korzystną tendencję dotyczącą wzrostu liczby uzyskanych zarodków, a linie AP15 i AP40 wykazały zbliżoną reakcję androgeniczną w obu wariantach doświadczenia. W przeprowadzonych
badaniach 41% otrzymanych zarodków rozwinęło się w rośliny o prawidłowej morfologii,
które aklimatyzowano w szklarni. Analiza cytometryczna wykazała wśród 84 regenerantów: haploidy (54,8%), diploidy (36,9%) i miksoploidy (8,3%).
REFERENCES (26)
1.
Adamus A., 2005. Aktualny stan badań nad wykorzystaniem podwojonych haploidów w hodowli warzyw. W: B. Michalik, E. Żurawicz (red.). Zmienność genetyczna i jej wykorzystanie w hodowli roślin ogrodniczych. Wydawnictwo Instytutu Sadownictwa i Kwiaciarstwa.
3.
Ari E., Yildirim T., Multu N., Buyukalaca S., Gokmen U., Akman E., 2016. Comparison of different androgenesis protocolos for doubled haploid plant production in ornamental pepper (Capsicum annuum L.). Turk. J. Biol. 40, 944–954.
4.
Chambonnet D., 1988. Production of haploid pepper plants. Bulletin Interne de la Station d’Amelioration des Plantes Maraicheres, d’Avignon-Montfavet.
5.
Cheng Y., Ma R., Jiao Y., Qiao N., Li T., 2013. Impact of genotype, plant growth regulators and activated charcoal on embryogenesis induction of pepper (Capsicum annuum L.). Afr. J. Bot. 88, 306–309.
6.
Dumas de Vaulx R., Chambonnet D., Pochard E., 1981. Culture in vitro d’anthéres de piment (Capsicum annuum L.) amélioration des taux d’obtention de plantes chez différents génotypes par des traitements á +35°C. Agronomie 1, 859–864.
7.
Dunwell J.M., 2010. Haploids in flowering plants origins and exploitation. Plant Biotech. J. 8, 377–424.
8.
Ercan N., Sensoy F.A., Sensoy A.S., 2006. Influence of growing season and donor plant age on anther culture response of some pepper cultivars (Capsicum annuum L.). Sci. Hortic. 110, 16–20.
9.
Galbraith D.W., Harkins K.R., Maddox J.M., Ayres N.M., Sharma D.P., Firoozabady E., 1983. Rapid flow cytometry analysis of the cell cycle in intact plant tissues. Science 220, 1049–1051.
10.
Gémesné J., Vági P., Vorosvary B., Kristof Z., 2001. Summarized results of in vitro haploid induction of vegetables as paprika, spice paprika, eggplants, cucumber, zucchini and onion. Acta Hortic. 725, 845–854.
11.
Gémesné J. A., Sági Z.S., Salamon P., Somogyi N., Zatykó L., Venczel G., 1998. Experiences and results of in vitro haploid methods application in pepper breeding programme. W: 10th EUCARPIA Meeting on Genetics and Breeding of Capsicum & Eggplant, Avignon, 201–205.
12.
Gyulai G., Gemesne J. A., Sagi Z., Zatyko L., Venczel G., 2000. Doubled haploid development and PCR-analysis of F 1 hybrid derived DH-R2 paprika (Capsicum annuum L.) lines. J. Plant Physiol. 156, 168–174.
13.
Kim M., Kim J., Yoon M., Choi D.I., Lee KM., 2004. Origin of multicellular pollen and pollen embryos in cultured anthers of pepper (Capsicum annuum L.). Plant Cell Tissue Organ Cult. 77, 63–72.
14.
Matsubara S., Hu K., Murakami K., 1992. Embryoid and callus formation from pollen grains of eggplant and pepper by anthem culture. J. Japan Soc. Hort. Sci. 61(1), 69–77.
15.
Matsubara S., Yamamoto M., Man-Hyun Jo., Murakami K., Man H.J., 1998. Embryoid and callus formation from microspores by anther culture from July to November in pepper (Capsicum annuum L.). Sci. Rep. Faculty Agric. Okayama Univ. 87, 117–122.
16.
Mityko J., Fari M., 1997. Problems and results of doubled haploid plant production in pepper (Capsicum annuum L.) via anther and microspore culture. Acta Hortic. 447, 281–187.
17.
Niklas-Nowak A., Nowaczyk P., 2009. Wpływ temperatury na efektywność androgenezy w obrębie rodzaju Capsicum. W: Genetyka i genomika w doskonaleniu roślin uprawnych. Wydawnictwo Instytutu Genetyki Roślin PAN w Poznaniu, Poznań, 275–281.
18.
Nowaczyk L., Nowaczyk P., Olszewska D., 2016. Treating donor plants with 2,4-dichlorophenoxyacetic acid can increase the effectiveness of induced androgenesis in Capsicum spp. Sci. Hortic. 205, 1–6.
19.
Nowaczyk L., Nowaczyk P., Olszewska D., Niklas-Nowak A., 2015. Effect of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid pretreatment of Capsicum spp. donor plants on the anther culture efficiency of lines selected by capsaicinoid content. BioTechnologia 96 (2), 179–183.
20.
Nowaczyk P., Kisiała A., 2006. Effect of selected factors on the effectiveness of Capsicum annuum L. anther culture. J. Appl. Genet. 47, 113–117.
21.
Nowaczyk P., Nowaczyk L., Olszewska D., Krupska A., 2009a. Androgenic response of genotypes selected from Capsicum annuum L. × C. chinense Jacq. hybrids. Acta Physiol. Plant. 31, 877–879.
22.
Nowaczyk P., Olszewska D., Kisiała A., 2009b. Individual reaction of Capsicum F 2 hybrid genotypes in anther cultures. Euphytica 168, 225–233.
23.
Olszewska D., Niklas-Nowak A., Kisiała A., Dzwonkowska M., Nowaczyk P., 2015. Agromorfologiczna i molekularna ocena podwojonych linii haploidów papryki (Capsicum annuum L.). ZPPNR 580, 95–104.
24.
Özkum Çıner D., Tipirdamaz R., 2002. The effects of cold treatment and charcoal on the in vitro androgenesis of pepper (Capsicum annuum L.) Turk. J. Bot. 26, 131–139.
25.
Parra-Vega V., Renau-Morata B., Sifres A., Segui-Simarro J.M., 2013. Stress treatments and in vitro culture conditions in uence microspore embryogenesis and growth of callus from anther walls of sweet pepper (Capsicum annuum L.). Plant Cell Tiss. Org. Cult. 112, 353–360.
26.
Popova T., Grozeva S., Todorova V., Stankova G., Anachkov N., Rodeva V., 2016. Effects of low temperature, genotype and culture media on in vitro androgenic answer of pepper (Capsicum annuum L.). Acta Physiol Plant. 38(11), #273. DOI 10.1007/s11738-016-2294-4.
| ISSN: | 0084-5477 |
We process personal data collected when visiting the website. The function of obtaining information about users and their behavior is carried out by voluntarily entered information in forms and saving cookies in end devices. Data, including cookies, are used to provide services, improve the user experience and to analyze the traffic in accordance with the Privacy policy. Data are also collected and processed by Google Analytics tool (more).
You can change cookies settings in your browser. Restricted use of cookies in the browser configuration may affect some functionalities of the website.
You can change cookies settings in your browser. Restricted use of cookies in the browser configuration may affect some functionalities of the website.
